| 货号 | 产品名称 | 规格 | 价格 | 优惠价 |
|---|---|---|---|---|
| C015-10 | C015 BL21感受态细胞 | 10×100μL | 300元 | 240元 |
| C015-20 | C015 BL21感受态细胞 | 20×100μL | 525元 | 420元 |
BL21是最早开发的用于原核表达的菌株,BL21 (DE3)、Rosetta、OrigamiB (DE3)等一系列原核表达菌株均来源于BL21。该菌株主要用于非毒性蛋白的表达,不含T7 RNA聚合酶,所以不能用于由T7启动子驱动的蛋白表达 (如:pET系列);但含有大肠杆菌RNA聚合酶,可以用于tac或trc等使用大肠杆菌RNA聚合酶的原核系统的表达 (如:pGEX,pMAL质粒)。BL21感受态细胞由特殊工艺制作,pUC19质粒检测转化效率>1×107 cfu/μg DNA。
DH5α菌株的基因型为:E. coli B F- dcm ompT hsdS(rB- mB-) gal [malB+]K-12(λS)。
使用方法:
1. 感受态细胞从-80℃拿出,迅速插入冰中,加入目的DNA(质粒或连接产物)并用手拨打EP管底轻轻混匀(避免用枪吸打),冰中静置25 min。
注意:所使用DNA体积不要超过感受态细胞悬液体积的1/10,100 μL感受态细胞能够被1 ng超螺旋质粒DNA所饱和。
2. 42℃水浴热激45 sec,迅速放回冰中并静置2 min,晃动会降低转化效率。
3. 向离心管中加入700 μL不含抗生素的无菌培养基(2YT或LB),37℃,200 rpm复苏60 min。
4. 5000 rpm离心1分钟收集菌体,留取100 μl左右上清,轻轻吹打重悬菌块,并涂布到含相应抗生素的2YT或 LB培养基上。
5. 将平板将平板置于室温直至液体被吸收,倒置平板,37 ℃ 培养12-16 小时。(如果进行蓝白斑筛选操作,将平板放37℃培养至少15 h。)
蛋白小量诱导表达Protocol:
1. 小摇接菌:在透气试管或透气离心管中准备1-3 mL含相应抗生素的液体LB(或2YT、TB、SOB等 营养丰富培养基),接入一个含有目的质粒的新鲜单菌落。以质粒pet32a为例:在TB营养液中过夜培养的菌体浓度约为LB的3-5倍,SOB的2-3倍。
2. 37℃,200 rpm 过夜摇菌约10-15h。
3. 大摇接菌:将第一步的小摇菌液按1-2%比例接菌到50 mL 含相应抗生素的LB(或2YT、TB、SOB 等营养丰富培养基),为增加溶氧,最好使用500 mL 三角瓶(加入营养液的体积一般为三角瓶标定 体积的1/10,最高不超过1/5)。
4. 37℃,150 rpm 摇菌到OD600值为0.5-0.8(一般需要2-4h)。
5. 空白对照取样(可选步骤):在加入诱导剂IPTG前可取样1 mL菌液到1.5 mL 离心管中,12000 rpm离心10 min,弃上清,沉淀放-20℃保存待用。
6. 第四步的三角瓶中加入IPTG至终浓度为1mM(IPTG浓度可自由调整,1MIPTG溶液货号:SL3861), 继续37℃,120rpm摇菌2-4h。
7. 不同时间点取样(可选步骤):最佳摇菌时间与所表达蛋白有关,表达蛋白不同最佳摇菌时间不同, 为找到最佳诱导时间可在不同诱导时间点取样(例:在诱导第2h,4h,6h,8h,14h取样,离心 后放-20℃保存)。
8. 离心收菌:三角瓶从摇床拿出,埋入冰中10 min, 4℃,5000g,10 min离心,弃上清,沉淀保存在-20℃。
9. 待所有样品准备妥当,可以做SDS-PAGE分析蛋白表达。
注意事项:
1. 感受态细胞最好在冰中缓慢融化。插入冰中8 min内加入目标DNA,不可在冰中放置时间过长,长时间存放会降低转化效率。混入目的DNA时应轻柔操作。
2. 转化高浓度的质粒或高效率的连接产物可相应减少最终用于涂板的菌量。
3. 诱导时,IPTG浓度可选(0.1-2 mM均可)。
4. 为获得需要量的蛋白,最佳诱导时间,温度,IPTG浓度需实验者优化。